Técnica de muestreo de material de laboratorio

CAPÍTULO 28 TÉCNICA DE TOMAR MATERIAL PARA LA INVESTIGACIÓN DE LABORATORIO

CAPÍTULO 28 TÉCNICA DE TOMAR MATERIAL PARA LA INVESTIGACIÓN DE LABORATORIO

Una de las áreas de trabajo de la enfermera en el departamento es tomar materiales biológicos para la investigación y preparar a los pacientes para esto. A materiales biológicos   incluye sangre, orina, heces, esputo, etc.

Tomando sangre La técnica de extraer sangre de una vena para estudios bioquímicos requiere una serie de pasos secuenciales. El muestreo de sangre de una vena para el análisis bioquímico se realiza por la mañana con el estómago vacío en una cantidad de 10 ml. El muestreo de sangre para VIH y la reacción de Wassermann (RW) se lleva a cabo en cualquier momento del día en una cantidad de 5 ml.

Primero, preparan todo lo necesario para la inyección: un trípode con tubos de ensayo y tapones, un contenedor para su entrega al laboratorio y su derivación al laboratorio. Verifique la fecha de esterilización y los indicadores de esterilidad en los paquetes con bolas de algodón y servilletas, la estanqueidad del empaque y la fecha de vencimiento de la jeringa.

El tubo de recolección de sangre debe estar seco (de lo contrario se produce la hemólisis de los glóbulos rojos), químicamente limpio, tener un tapón de goma frotado.

Después de eso, se lavan las manos con agua corriente, usan jabón líquido, realizan movimientos de acuerdo con el estándar, se secan las manos con una sola toalla y realizan antisépticos higiénicos para las manos de acuerdo con las reglas para prepararse para el estudio (ver Apéndice 4).

Luego se ensambla una jeringa estéril, se une una aguja, se verifica su permeabilidad, sin quitar la tapa. La jeringa se coloca en un paquete.

Está prohibido extraer sangre sin una jeringa, solo con una aguja (¡existe el peligro de salpicaduras de sangre!).

Los antisépticos para manos higiénicos se llevan a cabo nuevamente de acuerdo con el estándar. Use guantes y gafas desinfectadas, un delantal y una máscara.

Se sientan (si se trata de un niño de escuela) o acuestan (un niño en edad preescolar) a un niño enfermo, se ponen una tela debajo del codo. Por encima del codo, sobre ropa o sal

fetki, imponga una banda de goma o un puño de velcro. Ofrézcale al niño que apriete el puño. Luego, encuentre la vena más llena. Los antisépticos para manos higiénicos se llevan a cabo nuevamente de acuerdo con el estándar. El sitio de inyección se trata con dos bolas de algodón humedecidas con alcohol, de manera amplia y estrecha, la tercera bola, también humedecida con alcohol, se sostiene en la mano izquierda.

Tome la jeringa con la mano derecha, perfore la vena de la misma manera que cuando realiza una inyección intravenosa. Tirando del pistón hacia sí mismo y asegurándose de que la aguja esté en la vena, recolectan 5-10 ml de sangre por estudio.

Ofrecen al paciente a abrir el puño, desatar el torniquete. Una tercera bola de algodón humedecida con alcohol se presiona contra el sitio de punción, y la aguja se retira de la vena con un movimiento rápido.

Le piden al paciente que apriete la pelota, doblando su brazo en la articulación del codo y sosteniéndola durante 3-5 minutos (para evitar la formación de un hematoma subcutáneo).

La sangre de la jeringa se vierte cuidadosamente sobre la pared en un tubo de ensayo, evitando que salpique. Cierre el tubo con un tapón de tierra.

La bola de algodón usada se arroja a un recipiente especial para la desinfección. Desinfectar la jeringa. La dirección o número de código del paciente está pegado al tubo.

Los tubos de sangre junto con un trípode se colocan en un recipiente herméticamente cerrado. Limpiar el lugar de trabajo. Las superficies de las mesas se tratan con un desinfectante para el tratamiento de la superficie, también vienen con un sofá o una silla en la que estaba sentado el paciente, se trata un torniquete y una tela oleosa.

Los guantes se quitan con la superficie de trabajo hacia adentro, se vierten en un recipiente para guantes usados. Lávese las manos con agua corriente usando jabón líquido, realizando antisépticos para manos higiénicos de acuerdo con la norma.

El contenedor y una bolsa de plástico separada con instrucciones se transportan al laboratorio.

Sistemas de muestreo de sangre VACUTAINER BD.Este es el llamado sistema seguro diseñado para el transporte y el análisis de alta calidad de muestras de sangre. Los llamados "aspiradores" proporcionan la máxima protección para el personal médico y la calidad del material tomado. Esta cerrado sistema de vacío, que consta de tres componentes:

1) aguja de doble cara con válvula de seguridad;

2) un soporte desechable;

3) tubos estériles con cierto volumen de vacío (Fig. 84).

Fig. 84)VACUTAINER BD del sistema del dispositivo:

1 - tubo de vacío estéril; 2 - una cubierta segura; 3 - aguja de doble cara con una tapa de seguridad rosa; 4 - etiqueta de bloque; 5 - volumen de vacío medido previamente; 6 - soporte desechable; 7 - válvula segura para muestreo múltiple de un paciente

Una de las ventajas del sistema, además de la seguridad y protección contra la infección parenteral con hepatitis B (VHB) y hepatitis C (VHC), la infección por VIH, ahorra tiempo. Tiempo de llenado del tubo de ensayo: hasta 7 s. Debido al hecho de que la sangre de una vena se vierte directamente en un tubo de ensayo, se garantiza la integridad de la muestra y la reproducibilidad del estudio.

Tomando orinaLa orina se recolecta durante la micción libre (de una porción promedio de orina) o con un catéter. En niños pequeños, especialmente en bebés, la recolección de orina presenta ciertas dificultades. Para estimular la micción, un bebé se acaricia con una mano, el abdomen se presiona ligeramente sobre el área suprapúbica. Bajo un chorro de orina, sustituya una bandeja limpia o platos con un cuello ancho. Si no es posible obtener orina, se unen un tubo de ensayo, un cono, una bolsa de plástico, etc. a los genitales con una tirita. (Fig. 85).

Fig. 85)Recolección de orina en bebés: a - en niñas; b - en niños

Para la recolección a largo plazo de orina diaria, a menudo se usan almohadillas especiales con un orificio. Cubra bien los genitales del niño con un parche y fije el vendaje en la región lumbar. Se une un tubo de goma a la almohadilla, cuyo segundo extremo se baja a un recipiente limpio. Aún más conveniente es la recolección de orina a través de un urinario especial con alarma.

Antes de tomar orina, es necesario realizar un baño completo de los genitales externos tanto en niñas como en niños. En algunos casos, debe usar soluciones desinfectantes, como furatsilina (1: 5000).

Mear en análisis general   y para el análisis de acuerdo con Nechiporenko, toman en la mañana, después de dormir, de la porción media del arroyo.

Prepare platos limpios y secos con anticipación. Cada botella debe estar pegada con una etiqueta que indique el nombre y el apellido del niño, la fecha, la separación y el propósito del estudio.

Para análisis de orinadebe ser de al menos 50-100 ml, para análisis de orina según Nechiporenko- al menos 10 ml. La orina debe entregarse al laboratorio dentro de 1 hora; se puede almacenar en cristalería en un lugar fresco, preferiblemente en un piso de baldosas.

Para análisis de orina según Kakovsky - Addisla orina se recolecta durante un día en un plato limpio separado. Mida su volumen y envíe al laboratorio 100-200 ml. Dadas las dificultades de la recolección prolongada de orina en los niños, a veces se usa una modificación del método: examinan la orina recolectada en 12 horas.

Para análisis de bacteriuriala orina se recoge después de lavar los genitales externos con una solución desinfectante (furatsilina). En un plato estéril coloque 15-25 ml de orina e inmediatamente cierre. En caso de resultados dudosos, la orina se toma con un catéter estéril.

Muestra Zimnitskyconsiste en determinar dinámicamente la cantidad y densidad relativa de orina excretada cada 3 horas durante el día. Para hacer esto, en la víspera del estudio, la enfermera prepara 8 botellas limpias (latas), las etiqueta, anotando el número y el apellido del niño (Fig. 86). El paciente orina a las 6 a.m., y esta orina se toma para análisis general. A partir de las 9 en punto, el niño orina cada 3 horas en una botella separada. Despiertan pacientes por la noche. A las 6 en punto de la mañana siguiente, se recolecta la última porción, y las 8 porciones se envían al laboratorio, donde se determina la densidad relativa de cada porción de orina, se mide la diuresis diurna y nocturna y, si es necesario, la cantidad de proteína en cada porción. Condición de prueba

Zimnitsky, que permite evaluar correctamente la capacidad funcional de los riñones, es el cumplimiento del régimen habitual de agua. Además, se registra la cantidad de líquido bebido durante el día.

Fig. 86)Material de muestra según Zimnitsky

Para determinar excreción(resaltar) sales y glucosa en orina diariaeste último se recoge en un contenedor. La primera porción de orina a las 6 a.m. no se tiene en cuenta, pero la orina se recolecta durante un período de 9 a.m. a 6 a.m. al día siguiente. Se mide la cantidad de orina excretada por día y se envían al laboratorio 80-100 ml del volumen total, lo que indica diuresis diaria.

Uso de tiras de prueba de diagnóstico para análisis rápido de orina.Las tiras reactivas (Self-Stik) de celulosa con zonas de reacción en fase sólida depositadas en ellas están diseñadas para obtener rápidamente un análisis bioquímico de orina. Están diseñados para resultados casi instantáneos por el principio de "sumergir y leer" sobre la base de una evaluación visual de la pantalla a color. Las tiras reactivas permiten realizar análisis de orina de acuerdo con 11 parámetros: proteínas (5 (10) -100 mg / dl), glucosa (de 100 mg / dl), gravedad específica (1000-1030), pH (5-9), cuerpos cetónicos ( 5 mg / dl), bilirrubina (0.5-3.0 mg / dl), urobilinógeno (0.1-1.0 mg / dl), nitritos (cualitativamente), sangre latente (5-10 glóbulos rojos por 1 μl) , leucocituria (15 leucocitos a la vista), ácido ascórbico (5 mg / dl).

1.Utilice platos limpios, secos y no utilizados previamente para recolectar muestras de orina.

2. De la caja de lápices, retire la tira reactiva. La caja de lápices se cierra inmediatamente después de quitar la tira.

3. La tira de prueba se sumerge en orina fresca y bien mezclada durante 1 s (ya no) (Fig. 87, a). El exceso de orina en la tira de prueba puede conducir a la distorsión de los resultados, por lo tanto, pase el extremo de la tira a lo largo del borde de los platos para no tocar las zonas de reacción. Exceso de drenaje de orina (Fig. 87, b). También se puede quitar humedeciendo los bordes de la tira con papel de filtro.

Fig. 87)Cambiar las tiras de prueba de diagnóstico. Explicación en el texto.

4. Compare visualmente el color de las zonas de reacción de la tira reactiva con el mapa de colores de la interpretación de los resultados ubicados en la caja de lápices (Fig. 87, c), preferiblemente con buena luz.

El tiempo de contabilidad de resultados de 30-60 s es crítico para la correcta interpretación de los resultados. Al leer los resultados, sostenga la tira horizontalmente para evitar la posible escorrentía de reactivos químicos a las zonas de reacción vecinas junto con el exceso de orina. Los cambios de color que afectaron solo los bordes de las zonas de reacción u ocurrieron después de más de 2 minutos no tienen valor de diagnóstico. No se requieren cálculos ni equipos adicionales.

Tomando heces.Para la investigación coprológicalas heces obtenidas por autodefección se colocan en platos limpios, secos, resistentes a la humedad y se entregan al laboratorio inmediatamente o después de 8-12 horas en condiciones de almacenamiento durante este tiempo en el refrigerador a una temperatura de 3-4 ° C. No puede examinar las heces después de un enema, el uso de supositorios rectales, la ingesta de laxantes o colorantes, así como las preparaciones de hierro,

muta, pilocarpina y algunos otros. Las heces no deben contener impurezas, como orina, desinfectantes. La investigación coprológica incluye el estudio macroscópico, químico y microscópico del material. La investigación bacteriológica (investigación sobre disbiosis) y bioquímica se lleva a cabo de acuerdo con indicaciones especiales.

En estudio de heces en huevos de gusanos y lambliael niño se planta en una maceta previamente tratada con agua hirviendo. Las heces para el análisis se toman de diferentes porciones con una varilla de madera o vidrio y se colocan en un frasco. El material se entrega al laboratorio dentro de los 30 minutos posteriores a la toma del análisis. Si se sospecha enterobiosis, se raspa una espátula de madera de los pliegues alrededor del ano. El raspado se transfiere a un portaobjetos de vidrio en una gota de solución de glicerol al 50% o solución isotónica de cloruro de sodio. Las heces para la detección del grupo intestinal y el transporte disentérico se toman con un tubo Cymann después de un acto de defecación de un pañal o maceta. El tubo se baja en un tubo estéril con un medio nutriente, se cierra con un tubo de gasa estéril y se envía al laboratorio.

Al preparar a un niño enfermo para examen de heces para sangrado ocultode la dieta durante 2-3 días excluye carne, pescado, todo tipo de vegetales verdes, huevos, así como hematógenos y medicamentos que contienen hierro, cobre y otros metales pesados, ya que estos alimentos y sustancias farmacológicas son catalizadores de las reacciones utilizadas para detectar sangre

Tomando frotis de la membrana mucosa de la nariz y la faringe.Los frotis se toman con hisopos especiales enrollados en un alambre o palo de madera. Los hisopos cocidos se esterilizan en un autoclave y se colocan en tubos de ensayo.

Niño preescolarel asistente de la enfermera se sienta en su regazo, las piernas del paciente están cubiertas con sus pies. Fija las manos del niño con su mano izquierda y sostiene su frente con su mano derecha (Fig. 88). La enfermera retira el hisopo de un tubo de ensayo, con una mano levanta ligeramente la punta de la nariz del bebé, y la otra elimina la mucosidad de los conductos nasales con un hisopo. No toque el hisopo con la mucosa nasal. Luego, el hisopo se inserta en un tubo estéril.

Con un nuevo hisopo, tome un hisopo de la garganta y de las amígdalas. Para hacer esto, presione la raíz de la lengua con una espátula y retire con cuidado la placa

Fig. 88)La posición del niño en el estudio de la cavidad oral y la faringe.

con amígdalas o moco de la parte posterior de la garganta. El tampón se coloca nuevamente dentro del tubo, en el que escriben el nombre, el nombre y la edad del niño, la fecha en que se tomó el material y el lugar de donde fue tomado. Esta información se puede indicar en la dirección que acompaña al laboratorio, que se adjunta al extremo exterior del tampón.

En niños mayores, el material para la investigación de la nariz y la faringe se toma sin ayudantes. El procedimiento se realiza con el estómago vacío, antes de tomar medicamentos y enjuagar la boca y la garganta con cualquier solución desinfectante.

Secuencia de acciones

al tomar un hisopo de la nariz:prepare un tubo de ensayo estéril con un hisopo, asiente al paciente (la cabeza debe estar ligeramente inclinada hacia atrás). Tomar un tubo de ensayo en mano izquierda, le quitan un tampón con la mano derecha. Luego, con la mano izquierda, se levanta la punta de la nariz del paciente, y con la mano derecha, el hisopo se introduce en el conducto nasal inferior con un ligero movimiento de rotación, primero en un lado, luego en el otro, sin tocar su superficie externa (Fig. 89, a).

Complete la referencia al laboratorio bacteriológico (indique que es un hisopo nasal, escriba el apellido, nombre, edad del paciente, fecha, nombre de la institución médica) y envíe un tubo de ensayo con él.

La secuencia de acciones al tomar un frotis de la garganta:prepare un tubo de ensayo estéril con un hisopo, asiente al paciente frente a la fuente de luz. En la mano izquierda tome un tubo de ensayo y una espátula, presiónelos en la raíz de la lengua. Mano derecha   Se saca un hisopo estéril del corcho, se pasa a través de los arcos y las amígdalas palatinas, izquierda y derecha (Fig. 89, b). El tubo con la dirección enviada al laboratorio.

Para el diagnóstico de infecciones respiratorias virales agudas en los primeros días de la enfermedad, se usa un frotis y una impronta de la mucosa nasal. Para la investigación, es necesario preparar un portaobjetos de éter limpio y sin grasa. Luego, se humedece una pequeña torunda de algodón montada en un palo de madera con una solución isotónica de cloruro de sodio y se introduce en el conducto nasal. La torunda se presiona contra la concha nasal inferior y realiza varios movimientos de rotación. Después de eso, se retira el tampón y se hacen huellas digitales en el portaobjetos. Para obtener frotis, se utiliza una placa de plexiglás con bordes redondeados y pulidos. La placa también se desengrasa con éter, se inyecta en la nariz, se presiona sobre la cubierta inferior y se realizan varios movimientos longitudinales.

Fig. 89)Tomando una muestra de la nariz (a) y faringe (b)

Colección de esputo.Es más fácil tomar esputo durante la tos: se recoge inmediatamente en un medio nutriente en placas de Petri. Para una viga

para la descarga del esputo viscoso, se prescriben infusiones de termopsis, se colocan tiritas o latas de mostaza y se bebe un vaso de leche tibia con bicarbonato de sodio. Al recolectar material en niños pequeños, es necesario presionar la raíz de la lengua para causar tos. Puede recolectar esputo durante la broncoscopia. Si es imposible obtener esputo mediante los métodos indicados, realizan un lavado gástrico, ya que el niño no sabe expectorar el esputo y se lo traga. El lavado gástrico se realiza con el estómago vacío. La flora microbiana de los lavados es similar a la de los bronquios.

Cuidado infantil general: Zaprudnov A.M., Grigoryev K.I. subsidio - 4ª ed., Revisada. y agregar. - M. 2009. - 416 p. : enfermo

La sangre venosa generalmente se toma de la vena cubital. En los lactantes, se extrae sangre de las venas frontales temporales o yugulares. La sangre debe fluir libremente. Inserte el tubo preparado previamente en el soporte de la aguja hasta que se detenga y sosténgalo hasta que la sangre deje de entrar en el tubo.

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TOMA, CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO Y ENTREGA DE MATERIAL PARA LA INVESTIGACIÓN DE LABORATORIO

Condiciones para obtener sangre venosa.

La sangre venosa generalmente se toma de la vena cubital. Si es necesario, se puede obtener de cualquier vena (muñecas, parte posterior de la palma, encima del pulgar, subclavio, etc.). En los lactantes, se extrae sangre de las venas frontales, temporales o yugulares.

Cuando se extrae sangre de una vena, es necesario evitar: lugares de cicatrices, contusiones, venas utilizadas para la transfusión de soluciones, venas de las piernas (en pacientes con diabetes, con flujo sanguíneo periférico deteriorado, angiopatías).

Para excluir los factores comunes que afectan los resultados de los estudios, se deben observar las siguientes condiciones para la preparación de pacientes:

• El muestreo de sangre se realiza antes de la administración o administración. medicinas, estudios instrumentales, fisioterapia.
• El muestreo de sangre (venosa y capilar) se lleva a cabo después de un descanso de 15 minutos del paciente en caso de estrés físico y emocional transferido.
• Se excluyen fumar y el alcohol inmediatamente antes del estudio.
• El muestreo de sangre se realiza con el estómago vacío por la mañana (hasta 10 horas), si es necesario (situaciones de emergencia), en cualquier momento del día; el paciente se sienta durante el muestreo; en pacientes severos, el muestreo de sangre se puede realizar mientras está acostado.

Para la punción venosa, puede usar tres opciones para los sistemas de punción:

• Sistemas de plástico desechables que consisten en un recipiente con una aguja desechable atornillada y un tubo de ensayo con un tapón ajustado y una aspiradora en el interior;
• Agujas con un diámetro interno de 0.55 - 0.65 mm;
• Jeringas desechables con volumen suficiente y un diámetro de aguja adecuado.

Equipo adicional:

• Puño o torniquete para sujetar la mano;
• Alcohol 70%;
• Bastoncillos de algodón o gasa estériles;
• Vendaje
• Parche;
• Almohada especial o rodillo.

Al tomar sangre, se deben observar estrictamente las reglas de asepsia y antiséptico.

El muestreo de sangre debe realizarse con guantes de goma, trátelos con alcohol al 70% antes de cada cerca.

La técnica para obtener sangre venosa.

El examinado se sienta o miente. Su posición debe ser cómoda, el brazo se extiende libremente hacia adelante y descansa sobre la especificación. almohada El manguito pellizca las venas durante un rato.no más de 30 segundos   (verifique que la pinza no toque las arterias; se debe sentir el pulso). El lugar de sujeción debe estar a 8-10 cm por encima del sitio de punción.

Procedimiento de muestreo de sangre venosa utilizando un sistema de vacío:

Elija tubos de ensayo, cuyo color de las tapas corresponde al color de las pruebas declaradas en la forma de dirección, prepare una aguja, soporte, toallitas con alcohol, adhesivo. Verifique las fechas de vencimiento de las vacuettes.

• Tome la aguja y retire la tapa protectora (si se usa una aguja de doble cara, retire la tapa protectora gris).
• Inserte la aguja en el soporte y apriete hasta que se detenga.
• Trate el sitio de punción 2 veces con un paño estéril humedecido con etanol al 70%.
• Después de que la piel se haya secado (unos segundos) con la mano izquierda, la enfermera debe agarrar la mano del paciente, sostener la vena con el pulgar (la piel debe estirarse para no tocarla).
• Retire la tapa del otro lado de la aguja e inserte la aguja en la vena. La aguja apunta hacia abajo, el lado afilado hacia arriba. La piel se perfora en un ángulo de 200. La sangre debe fluir libremente. El pellizco se libera después de que la aguja se inserta correctamente.
• Inserte el tubo preparado previamente en el soporte de la aguja hasta que se detenga y sosténgalo hasta que la sangre ya no ingrese al tubo. En este caso, la aguja perfora la membrana de goma y el tapón de goma en la tapa del tubo: se forma un canal entre el tubo con vacío y la cavidad de la vena. La sangre pasa al tubo de ensayo hasta que compensa el vacío creado en el tubo de ensayo (si la sangre no fluye, significa que la aguja ha pasado a través de la vena; en este caso, la aguja debe extraerse un poco (¡pero no retirarse!) Hasta que la sangre pase al tubo de ensayo). La precisión de llenado del tubo de ensayo es ± 10% del volumen nominal. Existe el riesgo de verificar visualmente el nivel de llenado en la etiqueta.
• Después de recibir la cantidad necesaria de sangre, se presiona el lugar de la cerca con una torunda de alcohol y se retira la aguja con cuidado.
• Es necesario retirar la aguja del porta agujas y volcarla en el des. solución
• Después de esto, se aplica un apósito o parche estéril en el sitio de punción. Dado que el porta aguja no tiene contacto directo con la sangre, debe desinfectarse con cualquier desinfectante plástico. Secar y reutilizar después de la desinfección.

La técnica de extraer sangre con una jeringa en un sistema de vacío ( tubos de vacío)

1. La sangre se extrae lentamente mediante punción venosa, siguiendo todas las reglas para el muestreo de sangre venosa.
2. Tome la vacuette deseada, abra la tapa, llene lentamente la vacuette (a lo largo de la pared) con sangre hasta una marca negra. En vacuettes coagulológicas, la sangre debe fluir directamente al citrato.
3. Cierre la tapa, mezcle suavemente, girando el wakuetu varias veces, sin agitar.

Si no aparece sangre después de la punción, se realiza una punción repetida. Con las venas "malas", se recomienda apretar y soltar repetidamente el puño del sujeto, calentando el lugar de captura, una leve palmada, bajando la mano hacia abajo. Con las venas "rodantes", es necesario sostener la vena con el pulgar de la mano, mientras que con las delgadas, use agujas más delgadas.

En pacientes con cianosis, se deben usar agujas de gran diámetro (la viscosidad de la sangre es mayor), en pacientes con hemofilia o con terapia anticoagulante, es aconsejable hacer una sola punción venosa con una aguja delgada, después de la recolección, es obligatorio un vendaje de presión. Con las transfusiones intravenosas de sangre o medicamentos, la sangre se toma lo más alto posible del sitio de la transfusión. En pacientes después de la pérdida de sangre o en pacientes con anemia, la cantidad de sangre extraída para la investigación debe ser mínima.

Si es necesario tomar sangre para varios tipos de pruebas de laboratorio, entonces la secuenciala valla   la sangre debe ser la siguiente:

1. Sangre para esterilidad, hemocultivo (siempre que se observe el tiempo de muestreo (consulte las instrucciones a continuación), no programe el muestreo de sangre para esterilidad para otros estudios).
2. Sangre para estudios bioquímicos, hormonas (excepto ACTH), marcadores tumorales, cardiomarcadores, marcadores de anemia, marcadores de diabetes mellitus, monitoreo de drogas (digoxina), inmunoglobulinas, sangre para infecciones (ELISA), incluyendo hepatitis, prueba de procalcitonina.
3. Sangre para estudios coagulológicos: coagulograma, antitrombinaIII , plasminógeno, anticoagulante lúpico, agregación plaquetaria, RFMC. Si se prescriben todas las pruebas anteriores, se extrae sangreun tubo de ensayo
4. Sangre para un análisis general.
5. Sangre para estudios inmunológicos.

Se toma sangre para dímeros D, prueba de troponina, hemoglobina glicosilada, electrolitos KShchS + (si se ordenan ambas pruebas) en una jeringa heparinizada (2-3 ml).

VACUETAS

Con gorra azul:   sangre para estudios coagulológicos (coagulograma, antitrombina-III , plasminógeno, lupus anticoagulante, agregación plaquetaria, RFMC).

Con tapa lila:   análisis de sangre general, sangre para catecolominas (adrenalina, noradrenalina), estudios de PCR.

Con una tapa roja:   sangre para estudios bioquímicos, marcadores tumorales, cardiomarcadores, marcadores de anemia, marcadores de diabetes mellitus, infecciones (ELISA), incluyendo hepatitis, monitoreo de drogas (digoxina), para el estudio del estado hormonal, factor antinuclear (ANF), prueba de NVT, crioglobulinas, inmunoglobulinas (Ig), complejos inmunes circulantes (CEC), prueba de Reberg.

Con una cubierta verde:   inmunograma

Sangre para estudios coagulológicos.

(coagulograma, antitrombina-III , plasminógeno, anticoagulante lúpico, agregación plaquetaria, RFMC)

La sangre se recolecta por punción venosa, observando todas las reglas para tomar sangre venosa para análisis,en un wakuetta con una gorra azul   a la etiqueta especificada. Mezcle suavemente de inmediato, sin espuma, para evitar la formación de microbunches.

Al prescribir tanto un coagulograma como las pruebas adicionales enumeradas, se extrae sangreun wakuetta

Para llevar sangre al coagulograma dentro de 1 hora al laboratorio. La congelación de sangre es inaceptable.

Sangre para examen hematológico

(análisis de sangre general):

Para obtener parámetros hematológicos, se utiliza sangre capilar y venosa. El muestreo de sangre capilar, por regla general, es realizado por un asistente de laboratorio, la sangre venosa es tomada por una enfermera.

Preparación de la asignatura. Existen factores generales que influyen en el resultado de los estudios hematológicos: estrés físico (caminar rápido, subir escaleras, etc.), excitación emocional, irradiación de rayos X, la posición del sujeto, trastornos del flujo sanguíneo periférico (por ejemplo, espasmo capilar), alimentos y medicamentos en la víspera del estudio. Los parámetros hematológicos están sujetos a variación durante el día (en particular, el número de leucocitos). El muestreo de sangre se realiza mejor en las primeras horas de la mañana después de un ayuno de 12 horas. Para observar la dinámica de los indicadores en los pacientes, se recomienda realizar estudios a las mismas horas. La sangre se recoge por punción venosa en vacuettes de plástico con EDTA (tapa de color lila) hasta la marca indicada, luego inmediatamenteagite suavemente sin hacer espuma en el contenido para que no se formen microbunches.   El volumen de sangre (2 ml) requerido para el estudio se indica en el tubo, de acuerdo con la cantidad de anticoagulante (EDTA) rociado en las paredes.

Sangre para estudios bioquímicos,

marcadores tumorales, cardiomarcadores, marcadores de anemia, marcadores de diabetes mellitus, infecciones (ELISA), incluida hepatitis, monitorización de fármacos (digoxina).

La sangre se recoge por punción venosaen vacuettes con una tapa roja que contiene un activador de coagulación de la sangre (gel) hasta la marca indicada, observando todas las reglas para tomar sangre venosa para el análisis.

Entregado dentro de 1 - 2 horas al laboratorio.

Sangre para el estudio del estado hormonal.

Para la investigaciónglándula tiroides(TSH, T3, T4, T3 libre, T4 libre, TG, anti-TPO, anti-TG): el paciente no debe tomar medicamentos que contengan yodo y bromo, durante 15 días: medicamentos hormonales y antitiroideos, anticoagulantes, antibióticos, sulfonamidas, antihistamínicos

Hormonas Genitales(FSH, estradiol, hormona luteinizante, progesterona, prolactina, coriongonadotropina, testosterona).

Marcadores de diabetes   (insulina, hormona paratiroidea intacta, péptido C). El suero se separa rápidamente de las células mediante centrifugación de la sangre y se congela rápidamente.

Cortisol   susceptible a fluctuaciones durante el día, por lo tanto, es necesario indicar en la dirección el momento de tomar sangre. La concentración de cortisol en la sangre se ve afectada por el estado psicoemocional del paciente, y la sangre se extrae en el estado de calma del paciente sin estrés.

En la dirección es obligatorio indicar:

• apellido, nombre y patronímico del paciente;
• año de nacimiento
• diagnóstico
• número de historial médico;
• serie y número de póliza de seguro y pasaporte;
• dirección
• quien dirigió;
• fecha y hora de muestreo;
• lista de pruebas requeridas.

Aldosterona, ACTH y hormona del crecimiento, orina en 17-hidroxiprogesteronaenviar al laboratorio de radioisótopos (verifique las condiciones del muestreo de sangre para la investigación en el laboratorio de radioisótopos).

Antes del estudio, los medicamentos hormonales se suspenden durante al menos una semana, si los medicamentos no pueden cancelarse o si necesita evaluar el estado hormonal mientras toma los medicamentos, esto debe indicarse en la dirección (nombre, dosis,hora de recepción).

RECOGIDA Y ENTREGA DE SANGRE PARA LA INVESTIGACIÓN INMUNOLÓGICA

La sangre se toma mientras está acostado o sentado por punción venosa (vena seca), con el estómago vacío, de 8 a 10 de la mañana.

Muestreo de sangre para estudios inmunológicos individuales.

Inmunograma:

1. La sangre se extrae en un wakuetta con una gorra verde en la marca.
2. Se extrae sangre en un wakuetta para un análisis de sangre general (con una tapa de color lila) hasta la marca.

Factor antinuclear (ANF)

Prueba de NVT   - En un wakuetta con una gorra verde a la marca.

Crioglobulinas   - en 2 vacuettes con una gorra roja a la marca.

Inmunoglobulinas (Ig)   - En un wakuetta con una gorra roja a la marca.

Complejos inmunes circulantes (CEC)   - En un wakuetta con una gorra roja a la marca.

Muestreo de sangre para estudios inmunológicos complejos.

I variante: inmunograma + factor antinuclear (ANF) + prueba de NVT

1. Vacuette con gorra roja.

II opción: inmunograma + crioglobulinas

1. Vacuette para estudios inmunológicos con gorro verde.
2. 2 vacuettes con una gorra roja.
3. Vacuette con tapa lila.

Opción III: factor antinuclear (ANF) + anticuerpo antinuclear

1. Vacuette con gorra roja.

Opción IV: inmunoglobulinas (Ig) + complejos inmunes circulantes (CIC) + factor antinuclear (ANF) + crioglobulinas.

1. 3 vacuettes con una tapa roja: cada una extrae sangre de la marca.

Variante V: inmunograma + factor antinuclear (ANF) + prueba de NVT + crioglobulinas

1. Vacuette para estudios inmunológicos con gorra verde.

2. Dos vacuettes con una gorra roja, cada una saca sangre de la marca.

3. Vacuettes con una tapa de color lila.

Todos los tubos deben estar etiquetados.

Se dibuja una dirección para indicar:

Nombre completo paciente, año de nacimiento, diagnóstico, serie y número de póliza de seguro y pasaporte, dirección de quién envió (departamento (número de identificación) u oficina clínica), fecha y hora de recolección de material, lista de pruebas necesarias.

Sangre en células LE

La sangre venosa se toma para análisis de acuerdo con las reglas de la punción venosa en un tubo de ensayo especial alto con heparina (2 gotas) en una cantidad de 10 ml. En la víspera del estudio, no se recomienda tomar anticonvulsivos, anticonceptivos orales, antibióticos, sulfonamidas, medicamentos antituberculosos.

La sangre se entrega al laboratorio dentro de 1 hora.

La dirección está llena deindicación obligatoria del tiempo de muestreo de sangre:

Nombre completo paciente, - pasaporte, dirección de registro,

Paul, - oficina,

Año de nacimiento, - fecha,

Póliza de seguro: el diagnóstico.

Sangre en marcadores tumorales

(AFP, PSA, cPSA, CEA, CA19-9, CA 125, CA 15-3, antígeno de carcinoma de células escamosas, antígeno de polipéptido tisular (TPAsuk), polipéptido de tejido específico (TPS), proteína S-100)

La sangre se recoge por punción venosa en un volumen de 5 ml en un tubo limpio y seco o en una vacuette con un tapón rojo (sangrar de una jeringa sin aguja, cuidadosamente, a lo largo de las paredes del tubo, evitando la hemólisis). El muestreo de sangre se realiza por la mañana, con el estómago vacío.

Sangre para catecolaminas (adrenalina, noradrenalina)

La sangre se recolecta por punción venosa en una wakuetta con una tapa de color lila (sangrar de una jeringa sin aguja, cuidadosamente, a lo largo de las paredes del tubo, evitando la hemólisis). Elimina la actividad física y la posibilidad de estrés durante la punción venosa. El muestreo de sangre se realiza por la mañana, con el estómago vacío. Una semana antes del muestreo de sangre, excluya los plátanos, las piñas, el chocolate, las frutas cítricas, el té fuerte, el café y las remolachas de los alimentos. Excluir medicamentos: antibióticos de aspirina, tetraciclina y cloranfenicol, quinina, quinidina, riboflavina, bloqueadores alfa y beta, tranquilizantes.

¡La sangre se entrega al laboratorio en el frío lo más rápido posible!

Sangre para estudios de PCR

Se extrae sangre por la mañana, con el estómago vacío en un wakuette con una tapa de color lila (como para un análisis de sangre general) hasta una marca negra, se deja almacenar a una temperatura de 2-8 ° C durante no más de 6 horas.¡No congelar!

Dibujar la dirección correspondiente, en la que indique:

Nombre completo enfermo

Género

Año de nacimiento

Rama

Póliza de seguro

Pasaporte

Dirección de registro

Fecha

Objetivo de investigacion

El diagnostico.

Las solicitudes de análisis deben acordarse con todos los médicos especialistas involucrados en el tratamiento del paciente, de modo que durante la punción venosa, tome material para todos los estudios necesarios y no repita el procedimiento.

Análisis de PCR de saliva

Se usa para detectar la infección por citomegalovirus.

Antes del muestreo, se excluyen los alimentos durante 4 horas y se realiza un enjuague de la cavidad oral 3 veces con solución salina.

La saliva se toma en un ependorf desechable estéril en una cantidad de 1,5 ml. Almacenar a 2-8 ° C, entregar al laboratorio dentro de las 5 horas.

Recogida de orina

Análisis de orina para análisis general, análisis de Nechiporenko

La orina se recoge por la mañana con el estómago vacío inmediatamente después de dormir. La porción promedio de orina de la mañana se recolecta en un plato seco, limpio y no estéril, con micción libre. Antes de la recolección, se realiza un baño completo de los órganos genitales externos. Es aconsejable usar un recipiente de cuello ancho con tapa; si es posible, la orina debe recogerse inmediatamente en los platos en los que se entregará al laboratorio.

¡No puedes tomar orina de un recipiente, pato, olla!

Una punción de catéter o vejiga solo se puede usar en casos extremos.

¡Desde un catéter de larga data, no se debe tomar orina para examinarla!

La orina recolectada se entrega al laboratorio lo más rápido posible.

• Nombre completo enfermo
• género
• año de nacimiento
• número de historial médico
• rama
• fecha
• tiempo de muestreo de material
• el diagnóstico.

Técnica de recolección diaria de orina.

Por la mañana, el paciente libera vejiga   en el baño (a las 6 a.m.). Luego, durante el día, recoge toda la orina en un recipiente limpio de cuello ancho con una tapa bien ajustada, con una capacidad de al menos 2 litros. La última porción es a las 6 a.m. La cantidad de orina diaria se mide con un cilindro graduado, parte de ella (100-150 ml) se vierte en un recipiente limpio en el que se entrega al laboratorio. En la dirección indica el tiempo de inicio y finalización de la recolección de orina, su cantidad diaria.

Orina en Zimnitsky

Yendo por un diaocho porciones de orina:

A las 6 en punto de la mañana, la orina se derrama; luego, toda la orina se recoge completamente cada tres horas en un recipiente aparte: 9 horas, 12 horas, 15 horas, 18 horas, 21 horas, 24 horas, 3 horas, 6 horas. Marque cada frasco y fije el tiempo de recolección. Todas las porciones se entregan a KDL con una dirección especial.

La prueba se lleva a cabo con el régimen habitual de bebida y la nutrición del paciente.

Prueba de reberg

La orina se recolecta un día antes del muestreo de sangre en un recipiente separado sin conservante. La primera porción a las 6 en punto se vierte, y la siguiente se recoge por completo. La última porción es de 6 horas al día siguiente. Se mide el volumen exacto de toda la orina recolectada, mezclar, verter 100-150 ml en un frasco, entregar muestras de orina y sangre al laboratorio.

La sangre se recolecta por punción venosa en un wakuetu con una tapa roja. El muestreo de sangre se realiza en la mañana del día de la recolección de la última porción de orina, con el estómago vacío.

En la dirección del estudio indique:

Sexo - Fecha

Año de nacimiento, - volumen diario de orina,

Peso, altura del paciente, - diuréticos aceptados,

Orina en catecolominas

Para el análisis, la orina diaria con un conservante (ácido clorhídrico 6 M, 10 ml) se recoge en un recipiente de vidrio oscuro y se almacena en un lugar fresco. El conservante se administra en el laboratorio. Al final de la recolección de orina, su volumen se mide con un cilindro graduado, teniendo en cuenta el volumen del conservante. Una porción de orina - 10 ml, que indica el volumen, el conservante y el período de tiempo durante el cual se recogió, se entrega al laboratorio.

Una semana antes de recolectar orina, excluya los plátanos, las piñas, el chocolate, las frutas cítricas, el té fuerte, el café y las remolachas de los alimentos. Excluya medicamentos: antibióticos aspirina, tetraciclina y cloranfenicol, quinina, quinidina, riboflavina, bloqueadores alfa y beta, tranquilizantes.

Orina para PCR

Se utiliza para diagnosticar una forma localizada de infección por citomegalovirus. La primera porción de orina se recoge en una cantidad de al menos 10 ml en una botella especial (tomada en el laboratorio) o en un tubo de ensayo sin conservante.

Entregar al laboratorio lo más rápido posible.

INVESTIGACIÓN DE ÓRGANOS GENITALES HEMBRA SEPARADOS

(el material lo toma un ginecólogo)

Dentro de las 24 horas previas al estudio, excluya las duchas vaginales, el uso de agentes terapéuticos intravaginales. El muestreo de material se lleva a cabo con instrumentos secos estériles, antes del examen manual. No tome material durante la menstruación. Al preparar frotis, se aplican muestras de material de diferentes áreas a diferentes portaobjetos de manera uniforme y delgada en toda la longitud del vidrio.

Análisis general de descarga

Se examina la descarga de la vagina, la uretra, el canal cervical.

El material se toma con una espátula estéril, se extiende uniformemente sobre un portaobjetos de vidrio, los frotis se secan al aire y se envían al laboratorio con un formulario adjunto.

No puede tomar el material con un bastoncillo de algodón, en la dirección que indique claramente de dónde procede el material.

Al examinar Trichomonas, se aplica una gota de secreción (vagina, uretra) a un portaobjetos de vidrio y se entrega inmediatamente al laboratorio para detectar formas móviles de Trichomonas.

Estudio de PCR

El raspado se realiza en tres puntos diferentes: canal cervical, fórnix vaginal posterior, uretra. Si es necesario, el material se toma de úlceras genitales (por ejemplo, para el herpes). Trate los genitales externos con un hisopo de algodón sumergido en una solución de peróxido de hidrógeno al 3%. Después de eliminar la mucosidad de la superficie del cuello uterino con un hisopo, introduzca una sonda estéril desechable en el canal cervical de 1 a 1,5 cm y gírela durante 3 a 5 segundos. Retire la sonda, evitando tocar las paredes de la vagina, y sumérjala en un ependorf estéril desechable con un medio de transporte. Entregar al laboratorio dentro de las 6 horas. despues de la valla.

Antes de raspar la uretra, es necesario tratar su abertura externa con un hisopo humedecido con solución salina estéril. Masajee la uretra a través de la vagina contra la articulación púbica y recoja el material de la misma manera que desde el cuello uterino.

Al recolectar material del fórnix vaginal posterior, retire el moco y la descarga abundante con un hisopo estéril, realice una sonda a lo largo de la superficie de la membrana mucosa en el área del fórnix posterior de la vagina y el ectocérvix. Retire la sonda, evitando tocar las paredes de la vagina, sumérjala en un ependorf estéril con un medio de transporte.

INVESTIGACIÓN DE ÓRGANOS GENITALES DE HOMBRES SEPARADOS

(el material es tomado por un médico)

Un estudio en presencia de cambios inflamatorios en los órganos genitales masculinos.

Lave minuciosamente los genitales externos y el perineo con jabón, enjuague con agua hervida, seque con un paño de gasa estéril, la superficie de la lesión se limpia con solución salina estéril, si hay una costra, retírela. Raspe la herida hasta que aparezca un líquido seroso, séquela con un paño de gasa estéril, presiónela sobre la base de la herida hasta que aparezca un líquido seroso limpio, tome el material con un hisopo de sonda estéril y use un portaobjetos de vidrio para preparar el frotis.

Prueba de secreción de próstata

El paciente no orina durante 4-5 horas. El material se obtiene después de un masaje energético de próstata realizado por un médico durante 3-4 minutos. Las primeras gotas de la secreción emergente se eliminan, las siguientes se recogen en un tubo de ensayo limpio y seco o en un portaobjetos de vidrio y se envían al laboratorio en una placa de Petri con un hisopo húmedo (para evitar que se sequen). Entregado lo más rápido posible.

Haga una dirección apropiada para indicar:

Nombre completo paciente, departamento,

Sexo - Fecha

Año de nacimiento, es el momento de tomar muestras del material,

El número de la historia clínica es el diagnóstico.

Examen de eyaculación

Recoja el material en un frasco de vidrio limpio graduado. El resultado óptimo es el estudio del secreto obtenido después de 3-4 días de abstinencia sexual. Examine el material inmediatamente después de recibirlo o entrégalo al laboratorio lo antes posible después de la eyaculación (dentro de 1 hora) en un recipiente tibio.

Es inaceptable recolectar y entregar la eyaculación al laboratorio en un condón, ya que en este caso hay una rápida destrucción de los espermatozoides.

Haga una dirección apropiada para indicar:

Nombre completo paciente - fecha

Departamento, - el diagnóstico.

Estudio de PCR

Se lleva a cabo no antes de las 12 horas posteriores a la última micción. La abertura de la uretra se puede tratar con un bastoncillo de algodón estéril sumergido en una solución de peróxido de hidrógeno al 3%. El material se toma de la membrana mucosa de la uretra con una sonda estéril desechable, que se inserta en la uretra a una profundidad de 3-4 cm en la fosa del escafoides, rotándola durante 3-5 segundos. Retire la sonda, sumérjala en ependorf con el vehículo, llévela al laboratorio no más de 6 horas después de la recolección.

ESTUDIO DE LA MANCHA

Las heces se deben entregar al laboratorio por la mañana, a más tardar 8-12 horas después de la defecación. Es necesario almacenar en frío a una temperatura de 3-5ºС (en el refrigerador).

Antes del estudio de las heces, se indica la medicación que afecta los procesos secretores, además de mejorar la motilidad intestinal, y los medicamentos cuyas impurezas en las heces cambian de color. Esto se aplica a medicamentos como laxantes, vago y simpaticotrópicos, sulfato de bario, bismuto, hierro, caolín, supositorios rectales, preparados a base de grasa, preparaciones enzimáticas y otros medicamentos que afectan los procesos de digestión y absorción.

No puede enviar heces al estudio después de enemas, examen de rayos X del estómago y los intestinos (no antes de 2 días). Las heces se recolectan en platos limpios, secos y de cuello ancho, preferiblemente de vidrio.

Heces en sangre oculta

3 días antes del análisis, excluya de la dieta carne, pescado, vegetales verdes, tomates y medicamentos que contengan metales (hierro, cobre).

Coprograma

En el estudio de las heces, cuyo objetivo principal es determinar la capacidad funcional del tracto digestivo, es decir, El grado de asimilación de nutrientes, es necesario dentro de 4-5 días para seguir una dieta especial que contenga un número específico de diferentes productos alimenticios. Al elegir una dieta, es necesario tener en cuenta el estado del sistema digestivo, así como la naturaleza habitual de la dieta. Se administra una dieta de prueba durante 4-5 días, se realiza un examen coprológico tres veces: en el tercer, cuarto y quinto día (sujeto al autovaciado del intestino). Si es imposible usar una dieta, es suficiente usar alimentos mixtos comunes que contengan los nutrientes necesarios en una cantidad moderada pero suficiente.

Haga una dirección apropiada para indicar:

Nombre completo paciente - fecha

Paul, - tiempo de ingesta de material,

Año de nacimiento: el propósito del estudio,

Departamento, - el diagnóstico.

Heces para protozoos

Las heces deben estar necesariamente recién asignadas: el estudio debe llevarse a cabo a más tardar 15-20 minutos después del movimiento intestinal, es decir todavía en condiciones cálidas; En las heces enfriadas, los protozoos pierden rápidamente su movilidad y mueren. En los casos en que no es posible una investigación inmediata, se utiliza enlatado. Los platos con un conservante se toman en el laboratorio, el material de prueba se coloca en una cantidad de aproximadamente 1: 3 de conservante. Cierre los platos con un tapón (que está cubierto con cinta adhesiva), marque y entregue al laboratorio.

Los quistes persisten mucho más tiempo, por lo tanto, la detección de quistes se puede llevar a cabo incluso después de varias horas, siempre que las heces se almacenen en el refrigerador (a una temperatura de 3-5 ° C), pero no más de 24 horas.

Los platos para recoger heces deben estar limpios, secos, libres de agua y desinfectantes, se debe evitar la orina y otros contaminantes.

CERCADO Y ENTREGA DE LÍQUIDO CEREBRAL

El líquido cefalorraquídeo se obtiene mediante punción lumbar, que un médico realiza en condiciones asépticas:

Procese cuidadosamente el sitio de punción (como con el muestreo de sangre);

Con una aguja estéril para punción espinal, recolecte varias muestras en tubos de centrífuga estériles, PCR en ependorf (para análisis general y citosis ~ 10 ml, cultivo bacteriológico ~ 2 ml);

El sitio de punción está cerrado con material estéril.

El licor debe enviarse al laboratorio inmediatamente después de la punción en tubos estériles cerrados con tapones de algodón estériles, asegúrese de marcar todas las porciones en los tubos y en las direcciones (cada dirección tiene su propia dirección). La cantidad recomendada de líquido cefalorraquídeo para investigación es de 10 ml, que se administra mejor en dos tubos de ensayo (para examen químico y microscópico). Para estudios de PCR, se permite el almacenamiento a una temperatura de 2-8 ° C durante 5 horas.

La lista de estudios de PCR: tuberculosis, herpes, infección por citomegalovirus,Candida

Debe notarse la presencia de impurezas en la sangre.

Haga una dirección apropiada para indicar:

Nombre completo enfermo

Género

Año de nacimiento

Número de historial médico

Rama

Fecha

Tiempo de muestreo

Número de servicio

El número de CSF tomado,

El diagnostico.

Recogida y entrega

TRANSMITIDOS, EXUDADOS

Los líquidos exudados se obtienen por punción de cavidades serosas (pleural, abdominal, pericárdico, etc.). La punción es realizada por un clínico.

El líquido obtenido por punción se recoge en un plato limpio y seco. La cantidad total del líquido obtenido se entrega al laboratorio inmediatamente después del pedo. Asegúrese de etiquetar todas las porciones y, en consecuencia, en las direcciones (para cada porción en su propia dirección).

Haga una dirección apropiada para indicar:

Nombre completo enfermo

Género

Año de nacimiento

Número de historial médico

Rama

Fecha

Tiempo de ingesta de líquidos

La cantidad de líquido tomado

El diagnostico.

Primera ciudad hospital clinico   ambulancia

Universidad Estatal de Medicina del Norte

Curso de diagnóstico de laboratorio clínico

Reglas para la preparación de análisis de sangre de laboratorio. Condiciones de muestreo de sangre capilar y venosa

Realizado por un médico interno:

Gernet M.M.

Líder del curso

Prof. Vorobyova N.A.

arkhangelsk 2008

Introduccion

Condiciones de muestreo de sangre capilar

Sangre para análisis clínicos generales

Condiciones de muestreo de sangre venosa

Beneficios de Vacutainer

Anticoagulante

Complicaciones de la extracción de sangre

Prevención de complicaciones

Entrega, almacenamiento y preparación de muestras para investigación.

Lista de literatura usada

Introducción

El cumplimiento de todos los métodos y pautas para la recolección de sangre venosa y capilar afecta la precisión del resultado. Es posible minimizar los posibles errores y garantizar la alta calidad de los estudios hematológicos con la estandarización de las etapas de trabajo preanalíticas y analíticas.

Condiciones de muestreo de sangre capilar

La precisión y la exactitud de los resultados están influenciadas por la técnica de muestreo de sangre, las herramientas utilizadas (agujas, escarificadores, etc.), los tubos en los que se realiza el muestreo y, posteriormente, el almacenamiento y el transporte.

La estandarización de la etapa preanalítica mediante el uso de consumibles comerciales estandarizados para la recolección, almacenamiento y transporte de muestras biológicas, reactivos estándar y sistemas de diagnóstico puede aumentar significativamente la confiabilidad y precisión del estudio.

Sangre para análisis clínicos generales

tomado de un paciente de un dedo, vena o lóbulo de la oreja, de recién nacidos desde el talón. Se recomienda un análisis de sangre por la mañana con el estómago vacío, antes del ejercicio y varios procedimientos de diagnóstico, tomando medicamentos, especialmente la administración parenteral. El material debe tomarse con guantes de goma, respetando las reglas de asepsia. Para tomar una muestra de sangre capilar, la sangre para un análisis clínico general se toma de un paciente de un dedo, vena o lóbulo de la oreja, de un talón en los recién nacidos. Se recomienda un análisis de sangre por la mañana con el estómago vacío, antes del ejercicio y varios procedimientos de diagnóstico, tomando medicamentos, especialmente la administración parenteral. El material debe tomarse con guantes de goma, respetando las reglas de asepsia. Para tomar una muestra de sangre capilar, se utilizan escarificadores de lanza desechables estériles (Gem, Medicon LTD, etc.) o perforadores láser.

Sangre capilar. Antes de la punción, la piel del dedo del paciente se trata con un hisopo estéril humedecido con: alcohol a 70 °. La piel en el sitio de punción debe estar seca, rosada y tibia, la sangre debe fluir libremente de la herida. No puede ejercer presión sobre el dedo, ya que el líquido del tejido ingresa al torrente sanguíneo, lo que distorsiona significativamente los resultados del estudio. Después de tomar sangre, se aplica un nuevo hisopo estéril humedecido con alcohol a 70 ° en la superficie de la herida.

El muestreo de sangre para estudios hematológicos se puede realizar de 3 maneras:

I. Después de perforar un dedo, se bajan unas gotas de sangre (al menos 3-4) sobre un objeto individual (reloj) de vidrio o nido de una tableta de plástico, se mezclan y se usan para el trabajo.

II La sangre se recoge con un capilar Panchenko estéril individual, previamente humedecido con citrato de sodio.

III. Después de la punción de la piel del dedo, se bajan de 6 a 8 gotas de sangre en un tubo de plástico con un anticoagulante K2 EDTA o K3EDTA (Trilon B) a una velocidad de 1.5-2.2 mg por 1 ml de sangre, o en tubos de plástico desechables especiales tratados con K EDTA (Deltalab, Sarstedt, Becton Dickinson, etc.). Inmediatamente después de tomar la muestra, mezcle bien volteando el tubo al menos 10 veces.

En el caso de utilizar 1 o 2 métodos de extracción de sangre en el laboratorio, los siguientes tubos se preparan de antemano con:

1. 4 ml de solución isotónica de cloruro de sodio al 0.9% para contar el número de glóbulos rojos,

2. 5 ml de una solución transformadora para determinar la hemoglobina,

3. 0.4 ml de una solución al 3% ácido acético   para contar la cantidad de glóbulos blancos.

4. Solución al 5% de citrato de sodio trisustituido, recogido en un capilar Panchenkov hasta la marca de 50 y drenado en un tubo de ensayo o tubos comerciales con citrato de Na al 3,8% en un tampón (Deltalab, Sarstedt, B&D, etc.), lo que permite mantener la estabilidad de los glóbulos rojos hasta 12 horas. - para determinar la VSG.

Inmediatamente después de tomar sangre, agregue 1 μl de sangre a los tubos primero, segundo y tercero y enjuague la pipeta varias veces en la capa de líquido superior. Un análisis de sangre comienza con una dilución para los glóbulos rojos, ya que el trabajo adicional para determinar la cantidad de leucocitos y el contenido de hemoglobina se asocia con el uso de reactivos que conducen los glóbulos rojos. Para determinar la VSG en el capilar lavado con citrato de sodio, se extrae sangre dos veces hasta la marca 0 (100 divisiones) y se sopla en un tubo de ensayo con solución de citrato de sodio (proporción de sangre a reactivo - 4: 1), se agita el tubo.

Para estudiar la fórmula de los leucocitos, se prepara la morfología de los glóbulos rojos, los glóbulos blancos, las plaquetas, los frotis de sangre: limpie el lugar de la inyección con una bola de algodón seca y aplique una gota de sangre en un portaobjetos de vidrio seco y sin grasa, luego los frotis finos se preparan rápidamente con vidrio pulido o una espátula especial (Gem, A / O UNIMED ").

Condiciones de muestreo de sangre venosa

Al donar sangre venosa, es deseable excluir los factores que afectan los resultados de los estudios: estrés físico y emocional, fumar (1 hora antes del estudio). La donación de sangre no debe administrarse después de la radiografía, el examen rectal o los procedimientos fisioterapéuticos. Se recomienda 1-2 días antes del estudio propuesto no comer alimentos grasos y alcohol.

La naturaleza del próximo procedimiento se explica al paciente. Inspeccione sus venas, si es necesario con un torniquete. Tome una jeringa con una capacidad correspondiente a la cantidad de sangre necesaria para el análisis. La aguja debe tener al menos 22 tamaños, de 2.5 a 4 cm de largo. Se coloca un torniquete "venoso" en el hombro. En lugar de un torniquete, el manguito del esfigmomanómetro se puede usar bajo la presión promedio entre el sistólico y el diastólico en este paciente. Se le pide al paciente que pellizque y abra su puño varias veces. Trate minuciosamente la piel en el sitio de la cerca prevista (generalmente la vena cúbica en la superficie interna del codo) con etanol al 70% u otra solución antiséptica y perfore la vena. A veces no es posible ingresar inmediatamente al vaso, en cuyo caso se perfora la piel cerca de la vena y luego se perfora la vena. En el momento en que la aguja ingresa a la vena, la sangre ingresa a la jeringa. Si no se recibe sangre, se tira de la aguja y la sangre generalmente comienza a fluir hacia la jeringa. El torniquete se afloja y le pide al paciente que abra el puño. Después del procedimiento, presionando ligeramente un trozo de algodón estéril, limpie el sitio de inyección. Antes de dar de alta al paciente, asegúrese de que se haya detenido el sangrado. En los lactantes, se puede obtener sangre de la vena yugular externa o femoral. La sangre de la jeringa se vierte cuidadosamente en un tubo de ensayo o un recipiente especial, después de quitar la aguja.

Recientemente, para la recolección de sangre venosa y capilar, se utilizan ampliamente sistemas desechables que son suministrados al mercado por varias compañías. En particular, OMB Medical Company presenta los sistemas de extracción de sangre venosa Vacuette fabricados por GreinerBio-one (Austria) en el mercado ruso. Todos conocemos los requisitos actuales para tomar muestras de sangre de una vena. Cumpliendo estos requisitos, a menudo encontramos una serie de dificultades: esto es la coagulación de la sangre en la aguja y la hemólisis causada por el doble paso de sangre a través de la aguja. Si es necesario, llenar con sangre varios tubos aumenta la duración del muestreo de sangre. Si se planea determinar los factores de coagulación, es muy importante observar estrictamente la relación sangre-anticoagulante, que no siempre es posible. Varios desordenes también ocurren cuando los tubos de sangre se entregan al laboratorio. ¿Con qué frecuencia nos encontramos con un tubo de ensayo que se rompe, se derrama sangre o parte de la sangre absorbida en un hisopo de algodón con el que se cierra el tubo de ensayo? Además, a pesar de que el personal trabaja con guantes, la sangre del paciente puede llegar a sus manos. Estos y muchos otros problemas se pueden resolver fácilmente utilizando los sistemas de extracción de sangre Vacuette. El sistema garantiza la seguridad completa del personal médico durante el trabajo en el momento de la extracción de sangre, ya que el contacto de sangre del paciente con el medio ambiente está completamente excluido. El procedimiento para tomar sangre toma solo 30 segundos y es indoloro para el paciente. El sistema proporciona la observancia más precisa de las reglas de la etapa preanalítica de la investigación de laboratorio, reduciendo significativamente la probabilidad de un resultado erróneo. Una variedad de componentes del sistema le permite tomar sangre de manera conveniente y segura para cualquier tipo de análisis de laboratorio. Vacuette® es un sistema de vacío completamente cerrado para recoger sangre de una vena.

El sistema Vacuette® es similar a una jeringa convencional, pero en lugar del pistón, surge un diferencial de presión debido al hecho de que se crea un vacío en el tubo. El sistema es más conveniente de usar y proporciona protección completa para el personal médico contra posibles infecciones.

La sangre extraída para obtener suero o plasma se centrifuga directamente in vitro. También es posible usar tubos de ensayo con un gel que, después de la centrifugación, separa el suero (plasma) del coágulo, evitando por completo la mezcla inversa.

Beneficios del sistema Vacutainer

1. Una aguja de doble cara que permite la recolección de sangre en varios tubos; previene el flujo de sangre de una vena; elimina la posibilidad de dolor residual después de la punción venosa; facilita el deslizamiento de la aguja dentro del tejido, lo que reduce las molestias para el paciente.

2. El tapón Hemogard proporciona la máxima protección para el personal, evitando el contacto con la sangre; consiste en un tapón interno de goma y una cubierta protectora de plástico; proporciona estanqueidad completa; Reduce el riesgo de contaminación al abrir el corcho.

3. Tubo de ensayo estéril Vacutainer: hay tubos de ensayo de varios volúmenes con concentración exacta de rellenos; anticoagulantes: citrato de sodio (tapas azules para tomar muestras en un coalagrama) (citrato de 0,5 ml), sales de heparina, sales de potasio de EDTA (tubos con tapas de color lila para tomar muestras de sangre en el KLA): inhibidores de la glucólisis: fluoruro de sodio, yodoacetato de litio (recipientes para tomar muestras de sangre capilar en la UAC); inhibidores del factor plaquetario 4 para estudios de coagulación - solución CTAD; Solución de ADC para determinar grupos sanguíneos

Anticoagulante

Se requieren anticoagulantes en la mayoría de los estudios hematológicos. La elección del anticoagulante no juega el último papel. Los más utilizados son K2EDTA o K3EDTA (etilendiaminotetraacetato de dos o tripotasio o Trilon B), citrato trisódico y heparina. Las dos primeras sustancias inhiben la coagulación al unir el calcio en la sangre; la heparina actúa como un cofactor en la formación de un complejo de trombina con antitrombina III en plasma; como resultado, la trombina se une y no convierte el fibrinógeno en fibrina, y la sangre no se coagula.

EDTA es el anticoagulante preferido cuando se cuentan células sanguíneas utilizando analizadores de hematología automáticos. La concentración de EDTA en la sangre tomada debe ser constante y debe ser de 1.5 a 2.2 mg / ml de sangre (por ejemplo, para obtener una proporción de 1.5 mg / ml en un tubo de ensayo diseñado para 2 ml de sangre, se vierten 0.04 ml de 7.5 % de solución de K, EDTA o K3EDTA). La falta de anticoagulante conduce a la microcoagulación de la sangre y a la formación de un coágulo, el exceso, provoca un aumento de la presión osmótica de la sangre y las arrugas de las células. Un cambio en la concentración de anticoagulante de una medición a otra puede causar desviaciones incontroladas de los parámetros sanguíneos estudiados asociados, en primer lugar, con el volumen de glóbulos rojos y plaquetas. Algunos pacientes pueden experimentar una agregación plaquetaria espontánea leve o, con menos frecuencia, la llamada pseudotrombocitopepia dependiente de EDTA (de naturaleza inmune). No se recomienda el uso de Na, EDTA debido a su escasa solubilidad en la sangre.

La heparina es el mejor anticoagulante para determinar la resistencia osmótica de los glóbulos rojos y los estudios funcionales de los glóbulos blancos, incluida una serie de pruebas con marcadores inmunológicos. Una característica de la acción de este anticoagulante es la capacidad de prevenir la hemólisis tanto como sea posible. Las manchas hechas de sangre heparinizada y teñidas según Romanovsky tienen un fondo azulado.

El citrato de sodio es el anticoagulante de elección en los estudios del sistema de coagulación sanguínea y la función plaquetaria. El uso de heparina o citrato de sodio como anticoagulantes se acompaña de cambios en la estructura celular y, por lo tanto, no se recomienda para estudiar la morfología de las células sanguíneas, además, la heparina no previene la agregación celular, por lo que no es práctico usarlo en el cálculo de leucocitos y plaquetas.

La inconsistencia de la concentración de anticoagulante con el volumen de sangre extraída y la mezcla insuficientemente completa pueden conducir a errores significativos, que incluyen la determinación inexacta de la concentración de elementos celulares, la distorsión de la estructura morfológica de las células.

Complicaciones de extracción de sangre:

· Complicaciones tempranas: hematoma y colapso (desmayo).

· Puede evitar el hematoma creando una presión adecuada en el sitio de punción aplicando un vendaje apretado.

· En caso de que un paciente se desmaye, acueste el sofá en el sofá, huela a solución de amoníaco y llame a un médico.

· Complicaciones locales tardías: trombosis venosa, a veces se puede desarrollar tromboflebitis.

· Complicaciones generales tardías: infección con virus de hepatitis B y C, virus de inmunodeficiencia humana a través de una aguja o jeringa infectada.

Prevención de complicaciones:

Si es difícil detener el sangrado del sitio de punción, se coloca una posición elevada en esta parte del cuerpo y se aplica un vendaje de presión. Se observa al paciente hasta que se detiene el sangrado;

No se recomienda tomar sangre para ninguna prueba de laboratorio de la extremidad en la que se transfunde la sangre;

En pacientes con leucemia, agranulocitosis y pacientes con resistencia corporal reducida (inmunodeficiencias), la punción de un dedo o lóbulo de la oreja puede causar una infección en lugar de una punción venosa. Si aún se requiere sangre capilar para el estudio, la piel debe tratarse especialmente con un desinfectante. El alcohol etílico no es un medio de elección, es mejor usar soluciones antisépticas especiales.

Entrega, almacenamiento y preparación de muestras para investigación.

Se debe realizar un análisis de sangre inmediatamente después de tomar (se excluye la posibilidad de agregación plaquetaria espontánea) o después de 25 - 240 minutos (el tiempo requerido para la adaptación de las plaquetas al anticoagulante).

Inmediatamente después de tomarlo e inmediatamente antes del examen, la sangre debe mezclarse completamente a mano durante varios minutos para diluir el anticoagulante y la distribución uniforme de los elementos formados en el plasma. No se recomienda la mezcla continua prolongada de muestras hasta el momento de su investigación debido a la posible lesión y descomposición de las células patológicas.

Si es necesario llevar a cabo un análisis retrasado (transporte a largas distancias, un mal funcionamiento técnico del dispositivo, etc.), las muestras de sangre se almacenan en un refrigerador (4 ° - 8 ° C) y se examinan durante 24 horas. La sangre no se puede congelar. Con almacenamiento prolongado, las células se hinchan y cambian los parámetros asociados con su volumen. Practicamente gente sana   Estos cambios no son críticos y no afectan los parámetros cuantitativos. Sin embargo, en presencia de células patológicas, estas últimas pueden cambiar o incluso colapsar debido a la apoptosis en unas pocas horas desde el momento de la extracción de sangre.

Se realiza un análisis de sangre en el dispositivo a temperatura ambiente. La sangre almacenada en el refrigerador debe calentarse a temperatura ambiente, ya que la viscosidad de la sangre aumenta a bajas temperaturas, y los elementos conformados tienden a adherirse, lo que a su vez conduce a una mezcla alterada y una lisis incompleta. El examen de sangre fría puede ser la causa de la señalización en la diferenciación de leucocitos de tres miembros debido a la compresión del histograma de leucocitos.

Al realizar estudios hematológicos a una distancia considerable del sitio de recolección de sangre, inevitablemente hay problemas asociados con condiciones adversas de transporte. El impacto de factores mecánicos (agitación, vibración, mezcla, etc.), violaciones de temperatura, la probabilidad de derrame y contaminación de las muestras puede afectar la calidad de los análisis. Para eliminar estas causas, se recomienda utilizar tubos de plástico sellados herméticamente y recipientes especiales de transporte aislados al transportar tubos de sangre.

Lista de literatura utilizada:

1. Lugovskaya S.A. y otros diagnósticos de laboratorio. // S.A. Lugovskaya [Morozova V.T.,]. - M .: Unimed-press, 2002

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3. Nazarenko G.I., Kishkun A.A. Evaluación clínica de resultados de laboratorio. / G.I. Nazarenko [Kishkun A.A.]. - M.: Medicina, 2006.

4. Kishkun A.A. Pautas para los métodos de diagnóstico de laboratorio / A.A. Kishkun - M .: GEOTAR-Media, 2007.

5. Kozints T.I., Makarova V.A. El estudio del sistema sanguíneo en la práctica clínica. / T.I. Kozints [Makarova V.A.]. - M .: Triad-X, 1998.

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